一种菊花插穗常温保鲜剂及其制备方法和用途与流程

1.属于菊花插穗采后保鲜技术领域，具体涉及一种菊花插穗保鲜剂配方及其制备方法和用途。


背景技术：

2.菊花(chrysanthemum morifolium)是全世界最受欢迎和最重要的花卉经济作物之一，有大约1600年的栽培历史，主要用于观赏，食用，茶用和药用。近年来，全球花卉产业以年均25％的增速不断发展，菊花产业无论生产量还是消费量都位于世界花卉产业的前列。目前菊花繁殖主要采用插穗扦插繁殖法，优良插穗种苗是繁殖的关键环节之一。然而实际生产过程中较难获得大量整齐一致的插穗，如何通过对前期适龄插穗进行保鲜进而获得大批整齐一致的插穗，从而根据定植时期安排扦插(王梅等，2015)，也是培育优良扦插苗之前的重要一环。目前我国菊花种苗生产商多以生产插穗种苗为主，在插穗种苗采收后，需要进行整理包装、预冷处理，其后承接冷链送往客户手中(薛建平等，2013)。中国幅员辽阔，随着花卉产业的蓬勃发展，花卉自生产到实际销售到客户手中，需经历较长的储运过程，但在长途运输途中，菊花种苗的损耗率较高。
3.目前国内对于菊花插穗种苗采后研究极少，菊花种苗从成熟植株的顶芽采收，若不采取任何保鲜措施，种苗持续蒸腾失水，在储藏阶段有明显重量损失，储藏时间越长，呼吸作用消耗体内越多营养物质，细胞膜透性缓慢降低。生产实际中，对插穗预处理多采用多菌灵可湿粉剂的水溶液进行浸泡，储藏于4℃环境中。菊花种苗储藏于4℃环境中时，可保证种苗品质的储存时间为3周。储藏3周后重量损失急剧增大，成活率急剧下降(王梅等，2015)。施用适量氮素可以显著延长菊花种苗冷藏时间，改善种苗品质(刘新春，2013)。以上措施虽起到一定的保鲜、保质效果，但是企业的储运成本大副增加。然而，目前国内对菊花插穗种苗进行实际储运时的温度一般都在常温甚至高温地区储运温度可达30度以上，极易表现出萎蔫和黄叶，影响其后续定植及成花品质和商品价值。
4.目前切花采后保鲜中比较常用的保鲜剂有：银盐(agno3、ag2so4等)、8-羟基喹啉(8-hq)及其盐类衍生物、苯甲酸钠(naa)、硫酸铜等，其中ag

在花卉保鲜剂中应用较为广泛。此外，花卉衰老过程由多种激素共同作用、相互影响来调控。目前花卉保鲜技术较常用的生长调节物质有：细胞分裂素(6-ba)、细胞生长素(2,4-d)、赤霉素、水杨酸(sa)、萘乙酸(naa)、腐植酸(ha)等。6-ba可延长月季切花瓶插寿命(amanda et al.,2014)。使用浓度为25-100μmol/l 6-ba处理荷花后，花瓣褐化延后1d(wachiraya et al.,2013)。
5.目前国内外对于菊花种苗储运的研究，仅停留在时长、温度、营养的维度。耐储性是种苗的一项重要指标，如何在保证品质前提下，延长种苗常温储藏时间、运输距离，进而降低种苗储运过程损耗率及降低冷链物流成本，产生更高经济效益，是目前菊花种苗相关企业关注的重点，也是亟待解决的技术问题。


技术实现要素：

6.针对现有技术的不足，本发明提供不同保鲜剂配方对插穗种苗常温储藏时长及相关生理生化指标的影响，以期为企业生产提供理论和实践指导。本发明的目的是提供一种常温下有效保鲜菊花插穗的保鲜剂配方，以提高菊花插穗的耐储性，进而保证经过长时间的储藏、运输后仍能保持新鲜。
7.本发明旨在解决上述技术问题，提供了一种菊花插穗常温保鲜剂。
8.本发明还提供了一种制备所述菊花插穗常温保鲜剂的方法。
9.本发明还提供了一种菊花插穗常温保鲜剂的用途。
10.为实现本发明的目的，本发明提供了一种菊花插穗常温保鲜剂，该保鲜剂包含以浓度含量计的如下组分：
[0011][0012][0013]
优选地，该保鲜剂包含以浓度含量计的如下组份：
[0014][0015]
优选地，该保鲜剂包含以浓度含量计的如下组份：
[0016][0017]
本发明还提供了一种菊花插穗常温保鲜剂的制备方法，该方法包括如下步骤：
[0018]
a.将6-ba试剂先溶解于少量的1m naoh溶液后，用单蒸水定容成1mg/ml的6-ba母液；
[0019]
b.将2,4-d试剂先溶解于少量的无水乙醇后，用单蒸水定容成1mg/ml的2,4-d母液；
[0020]
c.将agno3试剂用单蒸水溶解后定容成1mg/ml的agno3母液；
[0021]
d.将所述浓度含量的蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液；
[0022]
e.向步骤d中的蔗糖溶液中依次加入所述浓度含量的6-ba母液、2,4-d母液和agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容，得到所述的鲜花保鲜剂。
[0023]
本发明还提供了一种菊花插穗常温保鲜剂作为菊花插穗保鲜的用途。
[0024]
进一步地，包括将菊花插穗浸泡于权利要求1所述的菊花插穗常温保鲜剂的步骤。
[0025]
优选地，所述菊花插穗摘取高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致。
[0026]
进一步地，方法为：将菊花插穗浸泡于所述菊花插穗常温保鲜剂中，40～60分钟后取出晾干，简单包装后贮藏即可。
[0027]
优选地，所述贮藏条件为避光，温度为20-30℃，湿度为80％-93％。
[0028]
优选地，所述贮藏条件为避光，温度为25℃，湿度为90％
[0029]
与现有技术相比，本发明的有益效果是：
[0030]
本发明提供有效的菊花插穗化学保鲜剂配方，只需要短时浸泡、简易包装和80％-93％湿度环境就能实现在常温20-24℃或是高温25-30℃条件下有效保鲜，大大提高了耐储性，在保证品质前提下，延长种苗常温储藏时间。本发明还具有操作简单，成本低，可操作性强等特点，在鲜花物流领域，可以有效降低种苗储运过程损耗率及降低冷链物流成本，产生更高经济效益。
附图说明
[0031]
图1为经不同保鲜剂处理、常温储藏17天后菊花插穗外观对比图。
[0032]
图2为经不同保鲜剂处理后储藏期间菊花插穗失重率统计对比图。
[0033]
图3为经不同保鲜剂处理后储藏期间菊花插穗叶片相对电导率统计对比图。
[0034]
图4为经不同保鲜剂处理、常温储藏17天后菊花插穗叶绿素spad值对比图。
[0035]
图5为经不同保鲜剂处理、30℃储藏7天后菊花插穗外观对比图。
具体实施方式
[0036]
本发明利用不同保鲜剂配方对市场常见菊花品种
‘
红日’、
‘
黄水晶’、
‘
黄草莓’等的插穗进行采后常温保鲜试验；供试菊花插穗采集自广州白云区竹料寮采村菊花基地(东经113.23
°
，北纬23.16
°
)。
[0037]
实施例1
[0038]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0039]
a.将0.1g6-ba试剂溶解于1ml的1m naoh溶液后，用单蒸水定容至100ml，配制成1mg/ml的6-ba母液；
[0040]
b.将0.1g2,4-d试剂溶解于1ml的无水乙醇后，用单蒸水定容至100ml，配制成1mg/ml的2,4-d母液；
[0041]
c.将0.1gagno3试剂用单用单蒸水溶解后定容至100ml，配制成1mg/ml的agno3母液；
[0042]
d.将30g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液；
[0043]
e.向步骤d中的蔗糖溶液中依次加入0.99ml的6-ba母液、0.2ml的2,4-d母液、20ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花保鲜剂。
[0044]
本实施例除了试验组a外，还设置了对比组b、c、d和参照组ck，具体的成分与浓度如表1所示,
[0045]
表1菊花保鲜剂配方表
[0046][0047]
2.插穗采后保鲜处理
[0048]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗分别放入表1所述的保鲜剂溶液中浸泡45min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0049]
3.储藏
[0050]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于25℃、90％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0051]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏17天后试验组a的菊花插穗外观品质依然良好，如图1所示。并对浸泡处理后的各组菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0052]
a.插穗失重率
[0053]
各处理菊花插穗样品各取3组(即3个重复)，每组30株插穗，称量各组插穗在储藏前的鲜重m0及各储藏天数的鲜重，取3个重复的平均值作为鲜重m
x
。通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算失重率标准误差，绘制失重率变化折线图，具体检测结果见图2。
[0054]
插穗失重率测定结果表明：菊花插穗储藏期间，各组插穗的失重率随储藏时间延长而呈上升趋势，试验组a的失重率在整个储藏期间上升缓慢，且都明显低于参照组和对比组。储藏至17天试验组a的失重率只有7.7％，参照组ck失重率为51.8％，对比组b失重率为52.3％、对比组c失重率为16.3％、对比组d失重率为52.4％。失重率反映植物的失水萎蔫程度，失重率越高失水越严重越萎蔫，由上述数据可知试验组a的失重率最低，且明显低于其它各组，由此可见其保鲜效果最好。
[0055]
b.插穗叶片相对电导率
[0056]
取发育一致的菊花插穗叶片，定量取3份(即3个重复)，每份2g，剪成碎片，分别放置于3个三角瓶中，向其中各加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中。把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算标准误差，绘制相对电导率变化折线图，具体检测结果见图3。
[0057]
插穗叶片相对电导率检测结果分析：相对电导率是反映植物膜系统状况的一个重要的生理生化指标,植物在受到逆境或者其他损伤的情况下细胞膜容易破裂,膜蛋白受伤害因而使胞质的胞液外渗而使相对电导率增大。叶片相对电导率的大小反应植物组织活性及其受损情况，可以作为判断菊花插穗保鲜效果的参考。从图3的数据可知，试验组a的插穗在储藏第12天叶片相对电导率为41.5％，参照组ck电导率为57.3％，对比组b电导率为
52％、对比组c电导率为52.7％、对比组d电导率为57％。试验组a的电导率最低，且明显低于其它组，由此可见试验组a的保鲜效果最好。
[0058]
c.叶绿素spad值
[0059]
菊花插穗储藏第17天，取各组10片插穗植株中部叶片(即10个重复)，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素相对含量，计算标准误差，绘制叶绿素相对含量变化折线图，具体检测结果见图4。
[0060]
叶绿素spad值测试结果分析：叶绿素spad值反映叶片的绿色程度，spad值偏小代表叶片黄化程度较大。叶绿素spad值的大小体现菊花插穗的新鲜程度，储藏后的菊花插穗叶绿素spad值可以反应出保鲜的效果。从图4的数据可知，试验组a的插穗在储藏第17天叶片叶绿素spad值为53.2，参照组ck叶绿素spad值为45.7，对比组b叶绿素spad值为48.9、对比组c叶绿素spad值为48、对比组d叶绿素spad值为42.1。试验组a的叶绿素spad值最高，由此可见试验组a的保鲜效果最好。
[0061]
实施例2
[0062]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制
[0063]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0064]
将21g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入0.5ml的6-ba母液、0.3ml的2,4-d母液、10ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0065]
2.插穗采后保鲜处理
[0066]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入所述保鲜剂溶液浸泡40min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0067]
3.储藏
[0068]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于20℃、90％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0069]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏12天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0070]
a.插穗失重率
[0071]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第12天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为20.3％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为31.6％。
[0072]
b.插穗叶片相对电导率
[0073]
菊花插穗储藏第12天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为37.1％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为52.3％。
[0074]
c.叶绿素spad值
[0075]
菊花插穗储藏第12天，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为45.7，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为42.7。
[0076]
实施例3
[0077]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制
[0078]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0079]
将30g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入0.9ml的6-ba母液、1.2ml的2,4-d母液、12.5ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0080]
2.插穗采后保鲜处理
[0081]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入所述保鲜剂溶液浸泡45min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0082]
3.储藏
[0083]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于20℃、88％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0084]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏12天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0085]
a.插穗失重率
[0086]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第12天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为15.3％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为31.0％。
[0087]
b.插穗叶片相对电导率
[0088]
菊花插穗储藏第12天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为34.2％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为54.0％。
[0089]
c.叶绿素spad值
[0090]
菊花插穗储藏第12天，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为49.2，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为42.0。
[0091]
实施例4
[0092]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0093]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0094]
将40g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入0.9ml的6-ba母液、0.5ml的2,4-d母液、29ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容
至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0095]
2.插穗采后保鲜处理
[0096]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入所述保鲜剂溶液浸泡40min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0097]
3.储藏
[0098]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于25℃、88％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0099]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏12天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0100]
a.插穗失重率
[0101]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第12天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为18.9％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为35.0％。
[0102]
b.插穗叶片相对电导率
[0103]
菊花插穗储藏第12天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为38.6％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为55.4％。
[0104]
c.叶绿素spad值
[0105]
菊花插穗储藏12天后，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为43.8，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为40.5。
[0106]
实施例5
[0107]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0108]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0109]
将30g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入0.8ml的6-ba母液、0.5ml的2,4-d母液、15ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0110]
2.插穗采后保鲜处理
[0111]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入所述保鲜剂溶液浸泡45min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0112]
3.储藏
[0113]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于25℃、93％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0114]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏12天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素
spad值进行检测。
[0115]
a.插穗失重率
[0116]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第12天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为16.5％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为31.5％。
[0117]
b.插穗叶片相对电导率
[0118]
菊花插穗储藏第12天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为34.8％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为52.0％。
[0119]
c.叶绿素spad值
[0120]
菊花插穗储藏第12天，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为48.4，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为40.7。
[0121]
实施例6
[0122]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0123]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0124]
将25g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入0.4ml的6-ba母液、0.6ml的2,4-d母液、15ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0125]
2.插穗采后保鲜处理
[0126]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗分别放入表1所述的保鲜剂溶液浸泡50min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0127]
3.储藏
[0128]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于25℃、90％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0129]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏12天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0130]
a.插穗失重率
[0131]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第12天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为17.1％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为34.8％。
[0132]
b.插穗叶片相对电导率
[0133]
菊花插穗储藏第12天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后
测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为35.1％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为55.0％。
[0134]
c.叶绿素spad值
[0135]
菊花插穗储藏第12天，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为48.5，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为42.0。
[0136]
实施例7
[0137]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0138]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0139]
将30g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入1.0ml的6-ba母液、0.3ml的2,4-d母液、24ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0140]
2.插穗采后保鲜处理
[0141]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗分别放入表1所述的保鲜剂溶液浸泡50min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0142]
3.储藏
[0143]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于27℃、85％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0144]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏10天的菊花插穗外观品质依然良好。并对试验所用的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0145]
a.插穗失重率
[0146]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第10天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为18.5％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为35.0％。
[0147]
b.插穗叶片相对电导率
[0148]
菊花插穗储藏第10天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为40.6％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为53.5％。
[0149]
c.叶绿素spad值
[0150]
菊花插穗储藏10天后，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为44.3，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为39.2。
[0151]
实施例8
[0152]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0153]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例
1。
[0154]
将35g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入0.95ml的6-ba母液、0.4ml的2,4-d母液、17.5ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0155]
2.插穗采后保鲜处理
[0156]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗分别放入表1所述的保鲜剂溶液浸泡50min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0157]
3.储藏
[0158]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于30℃、90％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0159]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏8天的菊花插穗外观品质依然良好。并对浸泡处理后的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0160]
a.插穗失重率
[0161]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第8天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为22.3％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为32.8％。
[0162]
b.插穗叶片相对电导率
[0163]
菊花插穗储藏第8天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为37.4％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为53.7％。
[0164]
c.叶绿素spad值
[0165]
菊花插穗储藏第8天，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为48.9，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为38.5。
[0166]
实施例9
[0167]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0168]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0169]
将25g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入0.6ml的6-ba母液、0.8ml的2,4-d母液、15ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0170]
2.插穗采后保鲜处理
[0171]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗分别放入表1所述的保鲜剂溶液浸泡55min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0172]
3.储藏
[0173]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简
单包装后，置于30℃、80％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0174]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏8天的菊花插穗外观品质依然良好。并对浸泡处理后的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0175]
a.插穗失重率
[0176]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第8天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为25.2％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为39.8％。
[0177]
b.插穗叶片相对电导率
[0178]
菊花插穗储藏第8天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为38.9％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为56.5％。
[0179]
c.叶绿素spad值
[0180]
菊花插穗储藏第8天，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为43.6，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为36.3。
[0181]
实施例10
[0182]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0183]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0184]
将30g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入0.99ml的6-ba母液、0.2ml的2,4-d母液、30ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0185]
2.插穗采后保鲜处理
[0186]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗分别放入表1所述的保鲜剂溶液浸泡60min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0187]
3.储藏
[0188]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于25℃、88％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0189]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏12天的菊花插穗外观品质依然良好。并对浸泡处理后的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0190]
a.插穗失重率
[0191]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第12天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为12.2％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为32.2％。
[0192]
b.插穗叶片相对电导率
[0193]
菊花插穗储藏第12天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为32.7％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为48.1％。
[0194]
c.叶绿素spad值
[0195]
菊花插穗储藏第12天，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为48.7，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为42.5。
[0196]
实施例11
[0197]
1.菊花插穗常温保鲜剂的配制：
[0198]
1mg/ml的6-ba母液、1mg/ml的2,4-d母液和1mg/ml的agno3母液配制方法如实施例1。
[0199]
将30g蔗糖溶于单蒸水中，搅拌均匀后得到蔗糖溶液，再向蔗糖溶液中依次加入1.0ml的6-ba母液、1.5ml的2,4-d母液、12.5ml的agno3母液，搅拌混合均匀后加入单蒸水定容至1000ml，得到所述的菊花插穗保鲜剂。
[0200]
2.插穗采后保鲜处理
[0201]
摘取菊花插穗，高度6-8cm，叶片5-7片，长势均匀一致；将插穗放入所述保鲜剂溶液浸泡50min，然后置于吸水纸上晾置，阴凉处晾干至插穗表面无水分残留。
[0202]
3.储藏
[0203]
将上述经保鲜剂溶液浸泡处理后的菊花插穗用多孔塑料袋或打孔自封袋进行简单包装后，置于25℃、88％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱进行储藏。
[0204]
4.对上述浸泡处理后的菊花插穗进行评价，结果表明，储藏12天的菊花插穗外观品质依然良好。并对浸泡处理后的菊花插穗进行插穗失重率、插穗叶片相对电导率、叶绿素spad值进行检测。
[0205]
a.插穗失重率
[0206]
取菊花插穗样品3组，每组30株插穗，称量菊花插穗在储藏前的鲜重m0及储藏第12天的鲜重m
x
。取3组平均值，通过公式：失重率(％)＝(m
0-m
x
)
×
100/m0，计算得到失重率为13.7％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗失重率为32.2％。
[0207]
b.插穗叶片相对电导率
[0208]
菊花插穗储藏第12天，取发育一致的菊花插穗叶片2g，剪成碎片，放置三角瓶中，加入20ml去离子水，并让材料完全浸在水中，把三角瓶放在摇床上振荡3h(40～60次/min)后用电导率仪测定电导率，用r1表示；然后，将三角瓶转入沸水浴中煮15min，冷却至室温后测定总的电导率，用r2表示。叶片相对电导率(％)＝(r1×
100)/r2，计算得到相对电导率为33.4％。未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗电导率为48.1％。
[0209]
c.叶绿素spad值
[0210]
菊花插穗储藏第12天，取10片插穗植株中部叶片，使用spad-502plus叶绿素仪(konicaminolta，日本)测量每片叶片的叶绿素spad值，取平均值得叶绿素spad值为49.8，未经保鲜剂溶液浸泡处理的菊花插穗叶绿素spad值为42.5。
[0211]
实施例12
[0212]
扦插成活率统计：将经过实施例5～10所述的保鲜剂配方浸泡处理过的菊花插穗置于30℃、90％湿度、黑暗环境的智能人工气候箱储藏7天。7天后取出，各试验组菊花插穗外观品质依然良好，对照组菊花插穗枯黄明显，如图5所示。将上述菊花插穗分别扦插于穴盘中，穴盘使用湿润河沙作为基质，统一放置在25℃、16h昼/8h夜的生长环境中，每2天喷施“金雷”牌杀菌剂(成分：精甲霜锰锌)，生长15天后拔出插穗，对其生根情况进行统计，有明显肉眼可见根系即判定为成活。统计结果如表2所示。
[0213]
表2菊花插穗扦插成活率统计表
[0214][0215]
结果分析：在30℃高温下储藏7天后，经过保鲜剂处理的菊花插穗外观品质良好，扦插成活率在90％以上，未经过保鲜剂处理的菊花插穗枯黄明显，扦插成活率只有55％，两者差距明显，说明本发明所提供的菊花插穗保鲜剂保鲜效果显著。
[0216]
上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。