一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物的制备方法

1.本发明属于食品领域，具体涉及一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物的制备方法。


背景技术：

2.公开该背景技术部分的信息仅仅旨在增加对本发明的总体背景的理解，而不必然被视为承认或以任何形式暗示该信息构成已经成为本领域一般技术人员所公知的现有技术。
3.血脂异常/高血脂是多种心血管相关疾病的基础血管疾病，具有复杂的机制，治疗起来较为繁琐和困难。科学研究表明，肠道微生物与血脂有关，其影响心血管疾病的发生或加重的机制可能包括但不限于促进肠道菌群代谢物的产生，免疫炎症反应的激活，脂质代谢的改变和氧化应激的发生，肠道菌群相关的代谢产物及其产生菌分别能促进/抑制高血脂以及其他心血管相关疾病。之前通过肠道菌群治疗高血脂最直接的方法是药物或饮食干预。
4.近年来，益生菌在饮品中应用广泛，数据显示，至今全球约4亿～5亿人在消费益生菌饮品。市场上，各种益生菌的饮料越来越多，各大品牌也纷纷推出益生菌饮料抢食市场。目前市面上此类饮料虽名目繁多，但在功能上却出现严重的同质化，特别是，缺乏降血糖降血脂类的益生菌产品，限制了该部分市场的开拓。


技术实现要素：

5.本发明为解决市场对具有降血糖降血脂功能的益生菌饮品的不足，以燕麦为主要原料，利用现代生物技术，将燕麦经益生菌发酵，对燕麦中的各种有效成分进行体外分解，将燕麦中大分子的蛋白质降解为低聚肽小分子物质，使其进入人体后直接被吸收，减轻人体负担，将燕麦中不能被人体降解的大分子β-葡聚糖降解为全分子量的β-葡聚糖，更好的发挥其降血脂、降血糖的功能，且饮品中含有益生菌，可调节人体肠道环境。
6.为实现上述技术目的，本发明采用如下技术方案：
7.本发明的第一个方面，提供了一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物，由燕麦低聚肽、低聚β-葡聚糖和l-乳酸组成。
8.其中，低聚肽与β-葡聚糖质量比为1:0.3～8，低聚肽与l-乳酸质量比为1:0.8～8。
9.本发明的第二个方面，提供了一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物的制备方法，包括：
10.将燕麦干燥，粉碎，水提，添加葡萄糖、水解蛋白、酵母抽提物和无机盐，灭菌，得到无菌燕麦提取物；
11.将所述无菌燕麦提取物进行益生菌发酵，得到燕麦的组合物发酵液；
12.向所述燕麦的组合物发酵液添加甜味剂、灭菌，得到益生菌发酵燕麦的组合物；
13.其中，所述的益生菌为凝结芽孢杆菌。
14.本发明的第三个方面，提供了上述的方法制备的益生菌发酵燕麦的组合物。
15.本发明的第四个方面，提供了上述的益生菌发酵燕麦的组合物在降血糖、降血脂食品领域中的应用。
16.本发明的有益效果在于：
17.(1)β-葡聚糖是一种水溶性纤维素，本发明通过水提将β-葡聚糖溶出，操作方法简单，所选用的益生菌为凝结芽孢杆菌，可产蛋白酶、纤维素酶等酶类，利用凝结芽孢杆菌发酵燕麦，可将燕麦中大分子的蛋白质降解为低聚肽小分子物质，将燕麦中大分子β-葡聚糖(2.2
×
106)降解为不同低分子量的β-葡聚糖(1.6
×
104～2.2
×
106)，使其有效成分变成易被肠道吸收的活性物质，较目前“酶解后的燕麦或燕麦汁”作为发酵原料制备的益生菌产品具有更高的营养价值。
18.(2)燕麦中含有蛋白质、不饱和脂肪酸和大量的膳食纤维，可促进肠道中双歧杆菌和乳酸菌等有益菌的生长和繁殖，且凝结芽孢杆菌产生l-乳酸，也可促使肠道中双歧杆菌和乳酸菌等有益菌的生长和繁殖，利用凝结芽孢杆菌发酵燕麦具有协同增效的作用，可调节胃肠道，补充益生菌，具有降血脂，降血糖和增强免疫力的作用。
19.(3)本发明中利用燕麦为益生菌生长提供充足的营养，益生菌也可以使燕麦的效用得到提高。
20.(4)本发明的组合物未添加任何防腐剂，经高温灭菌、无菌灌装，保质期长，绿色安全、饮用方便。
具体实施方式
21.应该指出，以下详细说明都是示例性的，旨在对本发明提供进一步的说明。除非另有指明，本发明使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属技术领域的普通技术人员通常理解的相同含义。
22.本发明的一个目的是提供一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物，所述的组合物为燕麦经干燥，粉碎，经水浸提，添加葡萄糖、水解蛋白、酵母抽提物和酸度调节剂等无机盐，灭菌后经益生菌发酵处理，添加甜味剂，得到益生菌发酵燕麦的组合物。
23.所述的益生菌为凝结芽孢杆菌。
24.所述的燕麦粉在益生菌发酵燕麦组合物中的重量g/体积ml百分比为1～10％，水解蛋白的加入量为重量g/体积ml比0.05～2％，酵母抽提物的加入量为重量g/体积ml比0.1～1％，氯化铵的加入量为重量g/体积ml比0.1～1％，硫酸锰的加入量为重量g/体积ml比0.01～0.05％，磷酸氢二钾的加入量为重量g/体积ml比0.01～0.5％。优选地，水解蛋白的加入量为1％，酵母抽提物的加入量为0.5％，氯化铵的加入量为0.75％，硫酸锰的加入量为0.03％，磷酸氢二钾的加入量为0.1％。
25.所述的甜味剂为重量g/体积ml百分比为1～5％的塔格糖和重量g/体积ml百分比为0.01～0.1％的三氯庶糖，优选地，塔格糖加入量为3％，三氯庶糖加入量为0.05％。
26.所述益生菌的添加量为1％～5％，优选地，接种量为3％。
27.所述益生菌的培养温度为35～42℃，培养时间10～48h，优选地，培养温度40℃，培养时间36h。
28.本发明的另一个目的提供一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物的制备方法，包括以下步骤：
29.(1)粉碎：将新鲜燕麦干燥、粉碎，过60～80目筛；
30.(2)浸提：取燕麦粉，加入纯净水，加热浸泡2小时，向浸泡液中添加(食品可用)水解蛋白、酵母抽提物、硫酸铵、硫酸锰、磷酸氢二钾，调节ph值6.5～7.0，115℃，灭菌60分钟；
31.(3)发酵：将冷冻保存的凝结芽孢杆菌接种于无菌的lb培养基中，充分混匀后，于37℃恒温培养箱中培养24h得到一代活化液，再取第一代活化液按5％(v/v)的接种量接种于lb培养基中于37℃培养24h得到二代活化液。当燕麦提取物温度降至30～40℃时，接种预培养3％的凝结芽孢杆菌，40℃，160r/min，培养36h，为燕麦的组合物发酵液。
32.(4)调配、灭活：向燕麦发酵液中添加甜味剂，搅拌溶解；115℃，灭菌30min，得益生菌发酵燕麦的组合物。
33.下面结合具体的实施例，对本发明做进一步的详细说明，应该指出，所述具体实施例是对本发明的解释而不是限定。
34.以下各实施例中所用的原料都可通过商购获得，所用的设备均为市售设备。
35.实施例1一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物的制备方法
36.将100g干燥后的燕麦粉碎，过60目筛，添加1.8l的纯净水，加热至80℃，搅拌浸提2h。向浸泡液中添加18g水解蛋白、9g酵母抽提物，13.5gnh4cl，0.54g mnso4·
h2o，1.8g k2hpo4·
3h2o，调节ph值7.0，115℃，灭菌30min，得到无菌燕麦培养基；将冷冻保存的凝结芽孢杆菌接种于无菌的lb培养基中，充分混匀后，于37℃恒温培养箱中培养24h得到一代活化液，再取第一代活化液按5％(v/v)的接种量接种于lb培养基中于37℃培养24h得到二代活化液；当燕麦提取物温度降至30～40℃时，接种3％预培养的凝结芽孢杆菌二代活化液，40℃，160r/min，培养36h，得到燕麦的组合物发酵液。向发酵液中添加5.4g的塔格糖和0.9g的三氯庶糖，搅拌溶解，115℃，灭菌30min，得益生菌发酵燕麦的组合物，于无菌条件下灌装，得益生菌发酵燕麦饮品(规格为100ml/瓶)。
37.实施例2一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物的制备方法
38.将100g干燥后的燕麦粉碎，过60目筛，添加1.8l的纯净水，加热至80℃，搅拌浸提2h。向浸泡液中添加10g水解蛋白、5g酵母抽提物，10gnh4cl，0.8g mnso4·
h2o，1.5g na2hpo4·
3h2o，调节ph值7.0，115℃，灭菌30min，得到无菌燕麦培养基；将冷冻保存的凝结芽孢杆菌接种于无菌的lb培养基中，充分混匀后，于37℃恒温培养箱中培养24h得到一代活化液，再取第一代活化液按5％(v/v)的接种量接种于lb培养基中于37℃培养24h得到二代活化液；当燕麦提取物温度降至30～40℃时，接种5％预培养的凝结芽孢杆菌二代活化液，40℃，160r/min，培养36h，得到燕麦的组合物发酵液。向发酵液中添加4.8g的塔格糖和0.6g的三氯庶糖，搅拌溶解，115℃，灭菌30min，得益生菌发酵燕麦的组合物，于无菌条件下灌装，得益生菌发酵燕麦饮品(规格为100ml/瓶)。
39.实施例3一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物的制备方法
40.将100g干燥后的燕麦粉碎，过60目筛，添加1.8l的纯净水，加热至80℃，搅拌浸提2h。向浸泡液中添加20g水解蛋白、12g酵母抽提物，15gnh4cl，0.48g mnso4·
h2o，2.1g k2hpo4·
3h2o，0.1g一水柠檬酸，调节ph值7.0，115℃，灭菌30min，得到无菌燕麦培养基；将冷冻保存的凝结芽孢杆菌接种于无菌的lb培养基中，充分混匀后，于37℃恒温培养箱中培
养24h得到一代活化液，再取第一代活化液按5％(v/v)的接种量接种于lb培养基中于37℃培养24h得到二代活化液；当燕麦提取物温度降至30～40℃时，接种1％预培养的凝结芽孢杆菌二代活化液，40℃，160r/min，培养36h，得到燕麦的组合物发酵液。向发酵液中添加6.0g的塔格糖和1.2g的三氯庶糖，搅拌溶解，115℃，灭菌30min，得益生菌发酵燕麦的组合物，于无菌条件下灌装，得益生菌发酵燕麦饮品(规格为100ml/瓶)。
41.实施例4一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物，由燕麦低聚肽、低聚β-葡聚糖和l-乳酸组成。
42.其中，低聚肽与β-葡聚糖质量比为1:0.3，低聚肽与l-乳酸质量比为1:0.8。
43.其中，燕麦低聚肽、低聚糖和l-乳酸的制备方式同实施例1，不同之处在于二者的组成比例。
44.实施例5一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物，由燕麦低聚肽、低聚β-葡聚糖和l-乳酸组成。
45.其中，低聚肽与β-葡聚糖质量比为1:4，低聚肽与l-乳酸质量比为1:4。
46.其中，燕麦低聚肽、低聚糖和l-乳酸的制备方式同实施例1，不同之处在于二者的组成比例。
47.实施例6一种具有降血糖降血脂功效的益生菌发酵燕麦组合物，由燕麦低聚肽、低聚β-葡聚糖和l-乳酸组成。
48.其中，低聚肽与β-葡聚糖质量比为1:8，低聚肽与l-乳酸质量比为1:8。
49.其中，燕麦低聚肽、低聚糖和l-乳酸的制备方式同实施例1，不同之处在于二者的组成比例。
50.对比例1燕麦组合物饮品
51.将100g干燥后的燕麦粉碎，过60目筛，添加1.8l的纯净水，加热至80℃，搅拌浸提2h。向浸泡液中添加18g水解蛋白、9g酵母抽提物，13.5g nh4cl，0.54g mnso4·
h2o，1.8gk2hpo4·
3h2o，调节ph值7.0，115℃，灭菌30min，得到燕麦的组合物，并添加5.4g的塔格糖和0.9g的三氯庶糖，搅拌溶解，115℃，灭菌30min，于无菌条件下灌装，得燕麦饮品(规格为100ml/瓶)。
52.检测方法：
53.益生菌发酵燕麦组合物中多肽分子量检测方法
54.样品预处理：取实施例1制备的10g益生菌发酵后的燕麦组合物产品，匀浆器破碎后，离心取上清液，冷冻干燥，取样品加水充分溶解，经0.45um滤膜过滤，另取未经益生菌发酵的燕麦组合物作为对照。
55.色谱柱：tskgel g2000swxl凝胶色谱柱(300
×
7.8mm，tosoh)，流动相：乙腈-水-三氟乙酸(40:60:0.05)；检测波长：220nm；流速：0.5ml/min；柱温：30℃；进样体积：10ul；等梯度洗脱。检测结果见表1。
56.表1燕麦发酵前后燕麦多肽分子量分布
57.58.β-葡聚糖含量和相对分子量检测方法
59.燕麦预处理：将燕麦干燥粉碎，加纯净水搅拌提取，离心收集上清液，加入蛋白酶、淀粉酶去除燕麦中的淀粉和蛋白，加入乙醇，离心收集沉淀，热水提取两次，加入20％硫酸铵沉淀，离心收集沉淀，冷冻干燥，收集燕麦中的β-葡聚糖。
60.益生菌发酵燕麦组合物预处理：将发酵液离心收集上清，加入蛋白酶、淀粉酶去除燕麦中的淀粉和蛋白，加入乙醇，离心收集沉淀，热水提取两次，加入20％硫酸铵沉淀，离心收集沉淀，冷冻干燥，收集益生菌发酵燕麦组合物中的β-葡聚糖。
61.β-葡聚糖的含量检测按照试剂盒说明(参照aoac995.16)，试剂盒购自爱尔兰megazyme公司，检测结果见表2。
62.β-葡聚糖的相对分子量检测方法为凝胶过滤色谱法，凝胶色谱条件：色谱柱：tskgel g400wpxl；流动相：0.1mol/l nano
3-0.05％nan3；流速：0.8ml/min；柱温：35℃；示差折光检测器(rid)；温度：50℃；进样体积：20μl，检测结果见表2。
63.表2燕麦发酵前后β-葡聚糖含量和分子量分布
[0064][0065]
注：示差检测不能区分出样品内蛋白多肽、糊精和小分子直链淀粉。经bradford法测各组分总蛋白后可见蛋白多肽主要分布在≤104范围，其余分子量范围内的蛋白可忽略不计。淀粉经发酵后可生成≤104范围的可溶性糊精和小分子直链淀粉，其余分子量范围内的淀粉溶解度低也可忽略不计。
[0066]
低聚肽含量计算方法
[0067]
根据燕麦多肽分子量分布查出各组分百分比，乘上bradford法测定的样品总蛋白含量，即得各分子量范围的低聚肽含量。
[0068]
l-乳酸含量检测方法
[0069]
采用hplc法检测。分别称取1g乳酸色谱级标准液，用超纯水定容至100ml，即为浓度为10g/l乳酸标准储备液。分别吸取10ml乳酸标准储备液于50ml容量瓶中，定容至50ml。分别吸取0.1ml，0.25ml，0.5ml，1.00ml，2.5ml、5ml、10ml酸标准储备液，定容至10ml，即为酸标准工作液，现用现配，进样之前所有样品均要通过0.22μm滤膜过滤。色谱柱bio-rad hpx-87h ion-exclusion column；流动相为5mm h2so4；柱温40℃；示差折光检测器；流速0.6ml/min。进样量20μl。
[0070]
燕麦发酵后β-葡聚糖、低聚肽和l-乳酸含量结果见表3。
[0071]
表3燕麦发酵前后低聚肽、β-葡聚糖和l-乳酸含量
[0072][0073]
乳酸杆菌和双歧杆菌活菌计数方法
[0074]
乳酸杆菌和双歧杆菌菌落计数参照食品安全国家标准-乳酸菌检验《gb4789.35—2016》。
[0075]
效果实验
[0076]
实施例1和对比例1中样品预处理：将实施例1和对比例1中样品匀浆破壁，并浓缩干燥得粉末状固体。
[0077]
效果例1益生菌发酵燕麦组合物对大鼠肠道菌群的影响
[0078]
雄性大鼠70只，适应性饲喂7天后，随机分为7组(n＝10)：分别是空白对照组，实施例1高、中、低剂量组，对比例1高、中、低剂量组。将预处理的实施例1与对比例1中样品配置成水溶液，以灌胃方式(1ml/100g)给与动物，模型对照组和空白对照组分别灌胃相同体积的蒸馏水，实施例1高、中、低组分别灌胃1.5g/kg bw、0.5g/kg bw、0.1g/kg bw的益生菌发酵燕麦组合物，对比例1高、中、低组分别灌胃1.5g/kg bw、0.5g/kg bw、0.1g/kg bw的燕麦组合物，各组每天固定时间灌胃一次，实验期间，各组大鼠自由进食、饮水。分别在实验的第14天、28天和35天，在无菌条件下收集各组大鼠的新鲜粪便0.2g，在粪便中加入灭菌的生理盐水，将其分别稀释到10-1
～10-7
，选择合适的稀释度样品100μl分别接种于选择性培养基上进行培养，每个稀释度做三个平行板，检测粪便中乳酸杆菌和双歧杆菌的含量，具体检测结果见表4。
[0079]
表4益生菌发酵燕麦组合物对大鼠粪便菌群的影响(log cfu/g，x
±
s，n＝10)
[0080][0081][0082]
注：
※
p《0.05，与空白对照组相比；
#
p《0.05，与对比例1高剂量组相比。
[0083]
由表4可以看出空白对照组在实验期间前后无明显差异(p》0.05)；灌胃第14d，实施例1中高、中、低剂量组都可以明显增加大鼠粪便中双歧杆菌和乳酸杆菌数量，且和空白对照组相比有显著差异性(p《0.05)；灌胃第28d，对比例1高剂量组大鼠粪便中双歧杆菌和乳酸杆菌数量增多，与空白对照组相比具有显著差异(p《0.05)；随着灌胃时间延长，实施例1中高、中、低剂量组和对比例1高剂量组大鼠粪便中双歧杆菌和乳酸杆菌增值明显，实施例1高剂量组与对比例1高剂量组相比具有可显著增加大鼠粪便中双歧杆菌和乳酸杆菌的数量(p《0.05)。
[0084]
这是由于经益生菌发酵之后的燕麦中β-葡聚糖分子量发生了变化，分子量由2.2
×
106的大分子消化分解为1.6
×
104～2.2
×
106不同的分子量，以及在发酵过程产生了l-乳酸，二者均可显著增加大鼠粪便中双歧杆菌和乳酸杆菌的数量。双歧杆菌和乳酸杆菌具有改善消化功能，增强机体的免疫力等功效。高分子量和低分子量的β-葡聚糖都能够起到调节肠道菌群的作用，但低分子量β-葡聚糖比高分子量β-葡聚糖对肠道菌群的影响更为明显。
[0085]
效果例2益生菌发酵燕麦组合物对高血糖大鼠的影响
[0086]
雄性大鼠100只，普通饲料适应性饲养7天，随后90只大鼠进行高酯饲料喂养30天后腹腔注射低剂量链脲佐菌素(stz，30mg/kg)2次，注射时间相隔7天，末次注射3天后禁食5h，通过尾尖采血测大鼠的血糖，血糖值在10～25mmol/l之间，说明糖尿病模型大鼠构建成功。将80只糖尿病模型大鼠随机分为8组(n＝10)，分别是：模型对照组，二甲双胍阳性对照组，实施例1高、中、低组、对比例1高、中、低组，另外10只健康大鼠作为空白对照组。将实施例1与对比例1中样品配置成水溶液，以灌胃方式(1ml/100g)给与动物，模型对照组和空白对照组分别灌胃相同体积的蒸馏水，实施例1高、中、低组分别灌胃1.5g/kg bw、0.5g/kg bw、0.1g/kg bw的益生菌发酵燕麦组合物，对比例1高、中、低组分别灌胃1.5g/kg bw、0.5g/kg bw、0.1g/kg bw的燕麦组合物，二甲双胍阳性对照组给予相同体积180mg/kg盐酸二甲双胍水溶液灌胃，各组每天固定时间灌胃一次，实验期间，各组大鼠自由进食、饮水。分别在灌胃后的第0周、4周、6周、8周、10周、12周对所有的大鼠尾静脉取血，用微量血糖仪检测空腹血糖值。具体检测结果见表5。
[0087]
表5益生菌发酵燕麦组合物对高血糖大鼠的影响
[0088][0089][0090]
注：
※
p《0.05，与空白对照组相比；
#
p《0.05，与模型组相比。
[0091]
由表5可知，造模前各组大鼠空腹血糖水平无统计学差异，造模后糖尿病模型大鼠各组空腹血糖值均较空白对照组大鼠明显升高(p《0.05)，说明糖尿病大鼠模型构建成功。当灌胃4周后，实施例1高剂量组空腹血糖下降显著(p《0.05)；随着灌胃时间的增加，实施例1中剂量组在灌胃6周后空腹血糖下降显著(p《0.05)；实施例1低剂量组在灌胃12周后空腹血糖下降显著(p《0.05)。对比例1高剂量组在灌胃12周后空腹血糖下降显著(p《0.05)；对比
例1中剂量组和对比例1低剂量组与糖尿病模型组相比空腹血糖并无明显差异。二甲双胍对照组在灌胃4周后空腹血糖显著低于糖尿病模型组(p《0.05)。实施例1高剂量组与二甲双胍对照组相比，空腹血糖值并无明显差异(p》0.05)。说明益生菌发酵燕麦的组合物具有降血糖的作用。再结合之前的表1可知，益生菌发酵燕麦，将燕麦中大分子蛋白质分解为低聚肽，可能是燕麦低聚肽具有降血糖的作用。
[0092]
效果例3益生菌发酵燕麦组合物对高血脂大鼠的影响
[0093]
雄性大鼠80只，普通饲料适应性饲养7天，随后70只大鼠进行高酯饲料喂养30天后，随机分为8组(n＝10)，分别是：模型对照组，辛伐他汀阳性对照组，实施例1高、中、低组、对比例1高、中、低组，另10只大鼠作为空白对照组喂饲普通饲料，将实施例1与对比例1中样品配置成水溶液，以灌胃方式(1ml/100g)给与动物，空白对照组和模型对照组每天分别灌胃相同体积的蒸馏水，实施例1高、中、低组分别灌胃1.5g/kg bw、0.5g/kg bw、0.1g/kg bw的益生菌发酵燕麦组合物，对比例1高、中、低组分别灌胃1.5g/kg bw、0.5g/kg bw、0.1g/kg bw的燕麦组合物，辛伐他汀阳性对照组给与相同体积5mg/kg辛伐他汀水溶液灌胃，各组每天固定时间灌胃一次，实验期间，各组大鼠自由进食、饮水。在灌胃后的第30天对所有的大鼠进行颌下取血，离心取血清，按照试剂盒测定血清中tc、tg和ldl-c含量具体检测结果见表6。
[0094]
表6益生菌发酵燕麦组合物对高血脂大鼠的影响
[0095][0096]
注：
※
p《0.05，与空白对照组相比；
#
p《0.05，与模型组相比。
[0097]
由表6可知，大鼠饲喂高脂饲料30天，糖尿病模型组血清中总胆固醇(tc)、甘油三酯(tg)和低密度脂蛋白胆固醇(ldl-c)较空白对照组含量显著增加(p《0.05)，说明小鼠长期进食高脂饲料，造成自身脂质代谢紊乱，进而导致高脂血症的发生。给予喂饲高脂饲料小鼠进行灌胃益生菌燕麦组合物，30天后，与模型对照组相比，实施例1高、中、低剂量组和辛伐他汀阳性组大鼠血清中tc含量明显降低(p《0.05)；实施例1高、中、低剂量组、辛伐他汀阳性组和对比例1高剂量组大鼠血清中tg(p《0.05)和ldl-c(p《0.05)含量明显降低。实施例1高剂量组与辛伐他汀阳性组相比，大鼠血清中tc(p》0.05)、tg(p》0.05)和ldl-c(p》0.05)并无明显差异。
[0098]
最后应该说明的是，以上所述仅为本发明的优选实施例而已，并不用于限制本发明，尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，对于本领域的技术人员来说，其依然可以对前述实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。